師兄,我的培養基脫氣少了一會,OCR 和 ECAR 的基線波動就很大
如果沒有充分脫氣,放入儀器后培養基里溶解的 CO? 會迅速逸出,導致 pH 持續上升,細胞代謝狀態會受到影響,數據也就不能反映真實情況了。
崩潰!就湊合了這一步,一整周白干了!
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做細胞能量代謝檢測都要注意哪些細節呢?這就以最常用的【ATP 產生速率檢測】為例,為大家詳解實驗準備和操作方案:
實驗前一天
1. 打開 Seahorse 代謝分析儀,使溫度穩定。
2.對于貼壁細胞,用適當的細胞生長培養基將細胞以預先確定的密度接種到 Seahorse XF 微孔板(懸浮細胞在實驗當天準備即可)。
3.在 37℃ 無 CO? 培養箱中過夜水化探針板。
4. 在 Wave 里設計實驗或使用 ATP 產生速率實驗模板(標準或誘導的實驗)。根據特定實驗設計,對模板進行必要的分組修改。
實驗當天
1. 無菌條件下,往 100 mL Seahorse XF DMEM 培養基,pH 7.4 中添加 10 mM XF 葡萄糖,1 mM XF 丙酮酸鈉,2 mM XF 谷氨酰胺。這些是推薦的起始條件;然而,所需的檢測液組分可根據細胞類型或體外培養條件而改變。
2. 溫熱檢測液到 37℃。
3. 37℃ 孵育直至準備使用。
注意:如果檢測液與此配方有顯著不同(即更高濃度的 XF 葡萄糖,XF 丙酮酸鈉或 XF 谷氨酰胺和 / 或其他培養基添加劑),如有必要,檢查檢測液的 pH 值并調至 7.4,需按照 Buffer Factor Protocol 測定緩沖系數值。
準備 Seahorse XF 細胞培養微孔板:
對于貼壁細胞:
1. 從 37℃ CO? 培養箱中取出細胞培養微孔板,在顯微鏡下檢查細胞以確認種板的一致性和正常的細胞形態。
2.棄去細胞培養微孔板中的細胞生長培養基。使用多通道移液器用預熱的檢測液洗細胞一次,然后置于 37℃ 無 CO? 培養箱中用檢測液孵育 45~60 分鐘。
3. 在開始 XF 實驗前,再次棄去檢測液并在每孔加入新鮮,預熱的檢測液。
對于懸浮細胞:
1. 從生長培養基中沉淀細胞,并用預熱的檢測液重懸。
2. 計數細胞,以這樣一個濃度懸浮細胞,即 50 μL(XF96 / XFe96)或 100 μL(XFe24)細胞包含每孔所需要的細胞數,留 4 個沒有細胞的孔作為背景校正孔。
3. 加入所需的細胞 / 孔,然后溫和地離心使細胞貼壁。
4. 每孔輕輕加入檢測液。實驗前將板子放在 37℃ 無 CO? 的培養箱中孵育 45~60 分鐘。
準備化合物儲液(現配現用):
1. 輕彈試劑管子確保在打開管子前粉末在管子底部。
2. 按照下表,用適當體積的檢測液重懸每種組分。旋渦震蕩約 1 min 以確保化合物完全重懸。
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準備加入探針板加藥孔中的化合物:按下表所示,每種化合物各用檢測液配制 3 mL。推薦使用 1.5 μM 的寡霉素和 0.5 μM 的魚藤酮 + 抗霉素 A(終濃度)。
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將化合物加入探針板加藥孔中
標準實驗- 在寡霉素和魚藤酮/抗霉素 A 之前沒有急性注射。將化合物加入已水化的探針板加藥孔中:加藥孔 A:寡霉素 加藥孔 B:魚藤酮/抗霉素 A
誘導實驗- 注射一種測試化合物,加入加藥孔 A 中,按如下所示:加藥孔 A:實驗化合物(急性注射)或溶劑對照 加藥孔 B:寡霉素 加藥孔 C:魚藤酮 / 抗霉素 A
運行 XF 實時 ATP 速率測定
安捷倫科技有限公司是生命科學與研究領域的全球領導者,始終致力于提供前沿的分析解決方案與創新技術。在細胞代謝研究領域,安捷倫推出的 Seahorse XF 分析儀被譽為活細胞能量代謝實時檢測的「金標準」,深受全球科研人員及藥物開發專家的信賴。
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內容策劃:沈佳鈺
內容審核:朱曉芳
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